應(yīng)用指南
BiacoreTM系統(tǒng)幵展免疫原性檢測(cè)
介紹
免疫原性是指生物藥物被注射到病人體內(nèi)引起不必要的 免疫應(yīng)答的藥物屬性。由于影響藥物的安全性和有效性, 當(dāng)幵發(fā)新型蛋白藥物時(shí),免疫原性是必須考慮的重要方 面。免疫原性測(cè)試需要在臨床前和臨床階段進(jìn)行。 美國(guó)食品藥品監(jiān)督管理局的《工業(yè)指南:治療性蛋白免 疫原性測(cè)試的方法幵發(fā)》⑴列明:免疫原性檢測(cè)方法 除靈敏度要求外,還必須能夠檢測(cè)所有抗體亞型,特別 是IgM和IgG亞型。推薦的靈敏度是250到500ng/ml。免 疫原性分析包括三個(gè)步驟:陽(yáng)性藥物的篩選、驗(yàn)證和表 征。初步篩選中可能會(huì)產(chǎn)生假陽(yáng)性結(jié)果,因此,在初步 篩選后通常需要進(jìn)行驗(yàn)證。經(jīng)過(guò)對(duì)陽(yáng)性樣品的鑒定和驗(yàn) 證后,就可以對(duì)初篩結(jié)果中的抗藥抗體(Anti-Drug Antibodies, ADAs)幵展全面的研究,包括其亞型(類(lèi)或 亞類(lèi))分析、結(jié)合穩(wěn)定性、抗原表位特異性和中和能力, 這些數(shù)據(jù)為深入研究免疫應(yīng)答提供了寶貴信息。
Aarden等人(2)觀察到IgG4是僅次于IgGl的由治療性單克 隆抗體(MAbs)產(chǎn)生的ADAs的主要亞型°IgG4—直與 治療性蛋白藥物的高劑量注射和長(zhǎng)時(shí)間暴露下所產(chǎn)生的 免疫應(yīng)答有關(guān)。由于IgG4型ADAs具有雙特異性(bi-specific nature),因此,其很難通過(guò)傳統(tǒng)的橋聯(lián)或均一的酶聯(lián)免 疫吸附法(ELISA)和增強(qiáng)性化學(xué)發(fā)光(ECLTM)方法檢測(cè)。 GE Healthcare提供了設(shè)計(jì)符合免疫原性分析流程通常所 要求的,符合GLP/GMP管理規(guī)范的系統(tǒng)。本文中的實(shí)例 展示了非標(biāo)記生物物理互作分析方法是如何成功地應(yīng)用 于免疫原性研究流程的所有環(huán)節(jié),并確保免疫應(yīng)答的高 可信度檢測(cè)、驗(yàn)證和全面表征的(圖1)。同時(shí),本文也 對(duì)Biacore系統(tǒng)和表面等離子體共振(SPR)技術(shù)的優(yōu)勢(shì) 與傳統(tǒng)技術(shù)進(jìn)行了比較。
圖1.—個(gè)典型的用于免疫原性分析的多步流程,包括篩選以發(fā)現(xiàn)陽(yáng)性樣品、陽(yáng)性樣品的驗(yàn)證以及對(duì)確認(rèn)的陽(yáng)性樣品 的進(jìn)一步表征。測(cè)試范圍根據(jù)法規(guī)、藥物類(lèi)型和臨床前/臨床階段的不同要求而不同°Biacore系統(tǒng)在整個(gè)工作流程中 提供了寶貴的信息。
公認(rèn)的靈敏度及對(duì)咼、低親和度抗藥抗 體的檢測(cè)—種經(jīng)過(guò)驗(yàn)證的,基于Biacore 3000系統(tǒng)構(gòu)建的,針對(duì) darbepoetin alfa 和epoetin alfa 的ADAs 篩選方法的檢測(cè) 靈敏度分別可以達(dá)到100ng/ml和80ng/ml(3)。另一個(gè)研 究報(bào)道稱(chēng),Biacore對(duì)romiplostim和促血小板凝集素的 ADAs的檢測(cè)靈敏度分別達(dá)到400ng/ml和200ng/ml。除 了達(dá)到法規(guī)要求的靈敏度外,Biacore系統(tǒng)還提供了寶貴 的動(dòng)力學(xué)信息,并同時(shí)能夠檢測(cè)高、低親和度的抗藥抗體。
在下面的例子中,勃林格殷格翰公司(Boehringer Ingelheim)在對(duì)治療用人源化抗體在臨床I期多劑量研 究中比較了Biacore檢測(cè)法和橋聯(lián)ELISA檢測(cè)法。結(jié)果顯示,Biacore T1001檢測(cè)法相比ELISA檢測(cè)法可以更早地 發(fā)現(xiàn)陽(yáng)性樣品(圖2)。這些早期免疫應(yīng)答的ADAs抗 體通常具有低親和度,且具有快結(jié)合/快解離的動(dòng)力學(xué) 特征。盡管ELISA檢測(cè)法的靈敏度相對(duì)較高,但由于考 慮到需同時(shí)對(duì)早期和成熟期的免疫應(yīng)答都做出檢測(cè)的重要性,Boehringer Ingelheim 最終選擇了 Biacore 檢測(cè)法作為他們免疫原性的篩選手段。
圖2.優(yōu)化的Biacore検測(cè)法在第一次注射(藍(lán)色柱)兩到三周后便能検測(cè) 到“持久性”和“過(guò)渡性”的免疫應(yīng)答,而橋聯(lián)ELISA検測(cè)法只能在注 射后12周后的“持續(xù)性”免疫應(yīng)答階段做出検測(cè),但是“過(guò)渡性”的免 疫應(yīng)答階段根本無(wú)法検測(cè)。
Biacore檢測(cè)法可以檢測(cè)低親和度ADAs的優(yōu)勢(shì)也被Lofgren 等所證實(shí)⑸。他們比較了橋聯(lián)ELISA方法與Biacore 方法對(duì)于全人源panitumumab( 一種與EGF受體結(jié)合的 單克隆抗體)的免疫原性分析°ELISA檢測(cè)法對(duì)高親和 度的ADAs檢測(cè)更加靈敏,但是Biacore檢測(cè)法對(duì)于低親 和度ADAs的檢測(cè)相比而言卻靈敏得多。對(duì)于來(lái)自臨床 試驗(yàn)的樣品,Biacore檢測(cè)法比ELISA檢測(cè)法可以檢測(cè)到 更多的陽(yáng)性樣品。此外,Biacore方法還利用中和抗體 (Neutralizing Antibodies, NAbs)發(fā)現(xiàn)了8種陽(yáng)性樣品, 而這些樣品在用ELISA方法檢測(cè)時(shí)卻被遺漏了。
大量關(guān)于應(yīng)用橋聯(lián)ELISA檢測(cè)法和Biacore免疫原性檢測(cè) 法對(duì)臨床樣品的檢測(cè)結(jié)果的比較總結(jié)于表1。在所有的 情況下,Biacore方法能夠比ELISA方法檢測(cè)到更多的陽(yáng) 性樣品。一個(gè)可能的原因是由于使用Biacore檢測(cè)法可 以檢測(cè)到那些低親和度且快速解離的ADAs和IgG4 (見(jiàn) 下文)。
Swanson等人展示了那些在Biacore方法中可以檢測(cè)到 而在ELISA方法遺漏的ADAs的臨床意義(6)。來(lái)自8個(gè) 患有抗體(Ab)介導(dǎo)的純紅細(xì)胞障礙性貧血病人的樣 品通過(guò)Biacore方法檢測(cè)為陽(yáng)性,但其中兩個(gè)樣品在ELISA 方法中的檢測(cè)結(jié)果卻為陰性。
表1.利用ELISA和Biacore檢測(cè)法檢測(cè)的ADA陽(yáng)性臨床樣品
藥物 | 陽(yáng)性數(shù)量(ELISA檢測(cè)法) | 陽(yáng)性數(shù)量(Biacore檢測(cè)法) |
碘131嵌合型腫瘤 | 4/78 | 7/78 |
生物治療藥物Merck Serono* | 19/62 | 15/62 |
Panitumumab (5) | 2 | 25^/612 |
重組人促紅細(xì)胞 生成素⑹ | 6/8§ | 8/8§ |
*在2011年慕尼黑生物制品免疫原性會(huì)議上展示的酸解離檢測(cè)法
+其中一個(gè)被發(fā)現(xiàn)在基于細(xì)胞的檢測(cè)法中具有中和效果
:其中八個(gè)被發(fā)現(xiàn)在基于細(xì)胞的檢測(cè)法中具有中和效果
§所有八個(gè)樣品都來(lái)自具有抗體介導(dǎo)的純紅細(xì)胞障礙性貧血病人
Nechansky等人也觀察到Biacore方法可以檢測(cè)到顯然更 多的ADA樣品數(shù)(8),并得出結(jié)論-表面等離子共振技 術(shù)(SPR)是首選方法,這主要是由于Biacore能夠檢測(cè) 低親和度的ADAs,同時(shí)提供定量數(shù)據(jù),例如結(jié)合和解離 速率以及亞型的鑒別。
對(duì)ADAs抗體的自動(dòng)帶藥篩選
藥物干擾對(duì)于所有免疫原性檢測(cè)法都是一個(gè)棘手的挑戰(zhàn), 特別是那些用于治療性單克隆抗體,藥物經(jīng)常以相當(dāng)高 的劑量給藥,并擁有較長(zhǎng)的半衰期。樣品中所存在的藥 物能夠結(jié)合ADAs,并阻止ADA與偶聯(lián)(包被)在芯片上 的藥物分子結(jié)合,因此會(huì)產(chǎn)生假陰性結(jié)果。Biacore T200 系統(tǒng)通過(guò)自動(dòng)酸化解決了這個(gè)問(wèn)題,它能夠在存在過(guò)量 藥物的環(huán)境下對(duì)ADAs進(jìn)行檢測(cè)。樣品通過(guò)酸化,使得藥 物-ADA復(fù)合物解離,然后在測(cè)定即將幵始前被中和,從 而避免重新形成藥物-ADA復(fù)合物。自動(dòng)酸化的優(yōu)點(diǎn)是樣 品只需要被短暫酸化,且對(duì)于所有樣品酸化時(shí)間都是固 定的。
這種酸解離策略使得Biacore檢測(cè)方法在藥物存在時(shí)也能 夠達(dá)到推薦的靈敏度。例如,不同濃度的抗rituximab抗 體與濃度逐級(jí)增加的藥物(rituximab)混合。在存在100 倍過(guò)量(摩爾比)的rituximab的情況下檢測(cè)到有0.5 g/ml 的抗rituximab抗體(圖3)。
圖3.使用(紅色)或不使用(藍(lán)色)酸解離策略在存在不同濃 度rituximab下對(duì)0.5 n g/ml的抗rituximab抗體的檢測(cè)。
英國(guó)伯明翰大學(xué)的一個(gè)研究小組分析了來(lái)自SLE病人的臨 床樣品中抗rituxima b抗體和rituxima b的水平⑼。在裝有免 疫原性模塊的Biacore T100儀器中采用酸解離操作發(fā)現(xiàn)了 樣品中以前被rituximab所掩蓋抗rituximab抗體。酸化分析 也顯示樣品中rituximab的存在,而不采用酸化則不能檢出 其存在。在2011年慕尼黑生物制品免疫原性會(huì)議上,來(lái)自 Merck Serono的Kramer博士展示了采用酸解離方法的自動(dòng) 化Biacore檢測(cè)法的結(jié)果,并與基于ELISA的酸解離檢測(cè)法 進(jìn)行比較。當(dāng)將69個(gè)臨床樣品進(jìn)行比較時(shí),相同的陽(yáng)性 樣品在兩種檢測(cè)法中都被檢出(部分結(jié)果被顯示在圖4中)。 然而,Biacore T100檢測(cè)法卻發(fā)現(xiàn)更多的陽(yáng)性樣品,對(duì)于 這種行為的可能的解釋是Biacore檢測(cè)法也可以發(fā)現(xiàn)那些具 有低親和度的ADAs,因?yàn)樗鼈兛赡茉贓LISA的洗滌步驟被 洗掉。
Merck Serono發(fā)現(xiàn)Biacore T100檢測(cè)法可以實(shí)現(xiàn)卓有價(jià)值 的自動(dòng)化運(yùn)行,節(jié)省勞動(dòng)力成本和降低出錯(cuò)的風(fēng)險(xiǎn)。這在 檢測(cè)方法被轉(zhuǎn)移到CRO公司時(shí)凸顯巨大的優(yōu)勢(shì)。相比而言, ELISA檢測(cè)法的步驟較為繁瑣,包括多步手動(dòng)移液操作, 并且一般需要三天左右才能獲得結(jié)果。
ELISA工作流程
第一天 | 第二天 | 第三天 | 第四天 |
?固定 | ?樣品稀釋 | ?洗滌 | ?評(píng)估 |
?孵育12小時(shí) | ? 酸化 | ?酸化5分鐘 | |
? 中和 | ?中和5分鐘,并轉(zhuǎn)移到新的微孔板 | ||
?孵育12小時(shí) | ?洗滌,封閉1小時(shí) | ||
?洗滌,加入第二種試劑1小時(shí) | |||
?洗滌,加入HRP共軛物30分鐘 | |||
?加入終止溶液30分鐘 | |||
?讀取微孔板 |
Biacore工作流程
第一天 | 第二天 | 第三天 |
?固定 | ?具有自動(dòng)酸化和中和的無(wú)人值守檢測(cè),時(shí)間取決于樣品數(shù)量 | ?評(píng)估 |
?加入樣品和試劑 | ||
?開(kāi)始檢測(cè) |
Biacore T100檢測(cè)法可以將樣品的制備工作量降至最低。 與ELISA檢測(cè)法相比,很少的手動(dòng)操作為Biacore檢測(cè)法 提供了更高的精確度(表2)。
圖5Biacore和ELISA免疫原性檢測(cè)法工作流程
Kramer博士認(rèn)為,“Biacore看起來(lái)是一種應(yīng)用酸解離檢 測(cè)法的理想技術(shù)”,Merck Serono正在多個(gè)項(xiàng)目中使 用Biacore系統(tǒng)幵展基于酸解離的免疫原性篩選檢測(cè)法。 表2.具有酸解離的檢測(cè)法批次間精確度比較。數(shù)據(jù)由 Merck Serono友情提供
ELISA,百分比偏差 Biacore, 百分比履
選樣 時(shí)間 | 患者A Biacore 檢測(cè)法 ELISA | 患者B Biacore 檢測(cè)法 ELISA | 患者C Biacore 檢測(cè)法 ELISA | 患者F Biacore 檢測(cè)法 ELISA |
幵始前 | ||||
168 h | ? | |||
240 h | ? | |||
312 h | ? | ? | ||
480 h | ? | |||
648 h | ? ? | ? | ? ? | ? ? |
816 h | ? ? | ? ? | ? ? | ? ? |
984 h | ? ? | ? ? | ? ? | ? ? |
圖4.病人臨床樣品中ADAs的檢測(cè)。
大分子應(yīng)用專(zhuān)題
通過(guò)驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)去除假陽(yáng)性結(jié)果
藥物競(jìng)爭(zhēng)檢測(cè)法通常被用于驗(yàn)證陽(yáng)性響應(yīng)是由于ADAs 特異結(jié)合于藥物,而不是與其他血清組分的相互作用。 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)很容易在Biacore系統(tǒng)上進(jìn)行;添加過(guò)量的藥 物到樣品中從而抑制結(jié)合響應(yīng)值,以證明響應(yīng)是來(lái)自 ADAs與傳感器表面上的藥物之間的特異結(jié)合(圖6)。 整個(gè)程序可以實(shí)現(xiàn)自動(dòng)化。
圖6使用Biacore系統(tǒng)的驗(yàn)證分析。
對(duì)ADAs的綜合表征
在陽(yáng)性樣品的鑒定和驗(yàn)證后,可以使用Biacore分析進(jìn)行 全面的表征。競(jìng)爭(zhēng)性配體結(jié)合分析、亞型分析(種類(lèi)或 亞型)、結(jié)合穩(wěn)定性、抗原表位特異性和中和能力研究 都為全面認(rèn)識(shí)免疫應(yīng)答的性質(zhì)提供寶貴信息。Biacore T200提供專(zhuān)門(mén)的軟件工具模塊用于亞型分析和結(jié)合穩(wěn)定 性測(cè)試。
ADAs的亞型分析
ADAs的亞型分析提供了關(guān)于ADAs的免疫功能的信息,例 如抗體Fc受體結(jié)合。亞型分析流程如圖7所示。在Mytych 等的研究中,含有抗darbepoetin alfa的血清ADAs的12個(gè) 臨床樣品被用于幵展亞型分析⑶。所有樣品均分別對(duì) 應(yīng)某種特定的抗體亞型,四個(gè)主要的抗體亞型都被檢測(cè) 出來(lái)。大多數(shù)ADA陽(yáng)性樣品含有IgG和IgM類(lèi)型。此外, 還發(fā)現(xiàn)了三個(gè)樣品呈現(xiàn)IgA陽(yáng)性,一個(gè)樣品呈現(xiàn)IgE陽(yáng)性。
圖7.利用Biacore對(duì)亞型進(jìn)行分析。來(lái)自樣品的ADAs可以與固定在表面 的藥物結(jié)合。然后,一系列抗亞型的抗體流過(guò)已結(jié)合上去的ADA,產(chǎn) 生響應(yīng)則表示存在不同的亞型。在這個(gè)圖中,抗igG2b試劑提供明顯 的響應(yīng),鑒定出所結(jié)合的抗體為lgG2b亞型。
IgG4的檢測(cè)
正如美國(guó)食品和藥物監(jiān)督管理局(FDA)所要求的,免 疫原性檢測(cè)法應(yīng)該能夠檢測(cè)所有的IgG亞型(i)°IgG4 是治療性單克隆抗體的主要的一種ADAS亞型(2,6),部 分I gG4可以通過(guò)抗體間的隨機(jī)交換重組,造成抗體雙特 異性(圖8A)。雙特異性的ADAs在橋聯(lián)或同源檢測(cè)方式 法中無(wú)法檢出(圖8B),因而很難通過(guò)常見(jiàn)的ELISA或ECL 方法檢測(cè)的到。然而,IgG4在Biacore系統(tǒng)的直接結(jié)合模 式中可以被檢測(cè)到。
圖8.雙特異性ADAs在橋聯(lián)ELISA檢測(cè)法中不能被檢測(cè)到°(A)在人抗 體之間自發(fā)和隨機(jī)地發(fā)生交換,造成其中一些具有雙特異性。(B) 雙特異性IgG4在橋接ELISA中將不會(huì)被檢測(cè),因?yàn)樗鼈儽仨氂袃煞N藥物 分子與一個(gè)ADA的結(jié)合。
抗原表位特異性的測(cè)定
在研究免疫原性時(shí),ADAs的抗原表位特異性的測(cè)定十分 重要。根據(jù)FDA的建議(1),申請(qǐng)人應(yīng)該研究在抗原上 的哪些區(qū)域產(chǎn)生了免疫應(yīng)答:“FDA建議申請(qǐng)人直接針 對(duì)完整分子和內(nèi)源對(duì)應(yīng)物進(jìn)行初步篩選試驗(yàn)。然而,對(duì) 于產(chǎn)品幵發(fā),申請(qǐng)人應(yīng)該研究導(dǎo)致免疫響應(yīng)產(chǎn)生的特異 抗原區(qū)域或“抗原表位”。這種測(cè)定方法對(duì)于融合分子 可能尤為重要,因?yàn)閮蓚€(gè)蛋白是通過(guò)基因或物理手段被 “融合”在一起的??梢栽诤Y選階段就利用Biacore系統(tǒng) 進(jìn)行抗原表位特異性的測(cè)定。一個(gè)便捷的方法就是固定 全長(zhǎng)的藥物在一個(gè)流動(dòng)池(Flow cell)中,同時(shí)固定藥 物的不同結(jié)構(gòu)域在其他流動(dòng)池中(圖9)。
圖9.同時(shí)進(jìn)行抗原表位作圖和亞型分析的檢測(cè)方法。
交叉反應(yīng)也可以采用相同的模式進(jìn)行測(cè)定,但是在每個(gè) 流動(dòng)池中固定不同的藥物。為了評(píng)估抗darbepoetin alfa 抗體是否存在潛在的對(duì)epoetin alfa的交叉反應(yīng),Mytych 等幵發(fā)了一種基于Biacore的雙流動(dòng)池生物傳感器免疫檢 測(cè)法,其中含有一個(gè)固定有epoetin alfa通道(3)。這 種免疫檢測(cè)法被Amgen公司作為首選方法,用于檢測(cè)和 表征人血清中的抗epoetinalfa和抗darbepoetin alfa抗體。
Stubenrauch等人幵展的工作證明,可以通過(guò)很少量的 Biacore實(shí)驗(yàn)中獲取豐富的信息(10)。通過(guò)高效地利用 這四個(gè)流動(dòng)池,可以對(duì)每個(gè)樣品進(jìn)行整合11種指標(biāo)的完 整的的免疫原性檢測(cè),包括臨床樣品中ADAs的應(yīng)答、亞 型、特異性和結(jié)合穩(wěn)定性等信息(圖9)。這種方法可將 來(lái)自藥物的特異性應(yīng)答與其他應(yīng)答區(qū)分幵來(lái),例如抗Fc 片段的IgM類(lèi)風(fēng)濕性因子應(yīng)答。研究者可以跟蹤特定的 ADA形成的時(shí)間進(jìn)程,可以實(shí)現(xiàn)針對(duì)每個(gè)病人的ADA應(yīng) 答分析,并與臨床觀察相關(guān)聯(lián)。評(píng)估ADA結(jié)合穩(wěn)定性一 般來(lái)說(shuō),在生物分子相互作用實(shí)驗(yàn)中,解離速率是一種 可以估計(jì)結(jié)合親和度的指標(biāo),抗體朝著更高親和度方向 上成熟通常會(huì)反映在更慢的解離速率上°Biacore系統(tǒng)能 夠通過(guò)對(duì)評(píng)估抗體亞型和結(jié)合穩(wěn)定性來(lái)監(jiān)控ADA的成熟 過(guò)程。陽(yáng)性臨床樣品中的ADA集群可以通過(guò)ADA與固定 于芯片的藥物之間的結(jié)合穩(wěn)定性來(lái)表征(圖10)。
圖10.Biacore表征陽(yáng)性臨床樣品中ADA與到固定于芯片上的藥物的結(jié)合 穩(wěn)定性。免疫應(yīng)答成熟通常帶來(lái)更慢的解離速率(下圖)。
評(píng)估ADA的親和度或解離速率通常較難,因?yàn)椋鄶?shù)抗 體是二價(jià)的和異源的°Biacore T200軟件提供了專(zhuān)用工 具,可用來(lái)區(qū)分快速解離和緩慢解離的抗體組分造成的 免疫響應(yīng)。
Mytych等介紹了另外一種用于評(píng)估臨床樣品中ADA的解 離速率的方法,通過(guò)記錄ADA幵始解離前和解離40分鐘 后的響應(yīng)信號(hào)來(lái)計(jì)算信號(hào)損失百分比。6個(gè)臨床樣品的 結(jié)合信號(hào)在幵始解離40分鐘后降低大約68%和89%,而
高親和度的陽(yáng)性對(duì)照則幾乎沒(méi)有解離。
無(wú)需標(biāo)記的競(jìng)爭(zhēng)性配體結(jié)合檢測(cè)法
作為ADA表征的一部分,確認(rèn)為陽(yáng)性的樣品需要進(jìn)一步 檢測(cè)中和抗體(Nab)的存在°NAb對(duì)治療性生物藥物 有中和作用。常規(guī)的Nab檢測(cè)法是基于細(xì)胞的方法,而 這些檢測(cè)法通常很繁瑣,且重復(fù)性差。作為一種替代方 法,競(jìng)爭(zhēng)性配基結(jié)合(Competitive Ligand Binding, CLB) 檢測(cè)法會(huì)在有些時(shí)』候被研究者所使用。根據(jù)EMA指南草案, 對(duì)于單克隆抗體藥物,CLB檢測(cè)法通常作為首選方法, 而不是生物檢測(cè)法(11)。來(lái)自四個(gè)公司的案例研究已 經(jīng)證明,生物檢測(cè)法和CLB檢測(cè)法提供結(jié)果可比的NAb的 檢測(cè)(12)"LISA或ECL等需要標(biāo)記的檢測(cè)方法很可能 對(duì)NAb的檢測(cè)產(chǎn)生不利的影響。Biacore系統(tǒng)上進(jìn)行的CLB 檢測(cè)法不需要標(biāo)記,并可以實(shí)現(xiàn)完全自動(dòng)化。Biacore CLB檢測(cè)法的原理如圖11所示。
圖11具有藥物中和效果的ADA在CLB檢測(cè)法中被檢測(cè)。
檢測(cè)(診斷)試劑的可靠鑒定和驗(yàn)證
經(jīng)過(guò)驗(yàn)證和全面表征的試劑是保證任何檢測(cè)方法的有效 性的先決條件-Biacore系統(tǒng)提供關(guān)于檢測(cè)/診斷試劑性 質(zhì)相關(guān)的詳細(xì)信息,例如抗體-抗原結(jié)合的特異性、動(dòng)力 學(xué)和親和度,這對(duì)于在方法幵發(fā)過(guò)程中選擇最優(yōu)的試劑 十分重要。對(duì)于某些需要二級(jí)檢測(cè)試劑的方法(如二抗 等),鑒定多種檢測(cè)試劑彼此之間同時(shí)且獨(dú)立地結(jié)合于 各自抗原至關(guān)重要。這種鑒定可以在Biacore系統(tǒng)上很容 易實(shí)現(xiàn),通過(guò)使用成對(duì)的抗原表位作圖功能自動(dòng)的完成。 除此之外,Biacore方法還能獲得的的動(dòng)力學(xué)和親和度信 息,可以幫助研究者優(yōu)化檢測(cè)方法的性能,且不會(huì)增加 對(duì)成本和其他資源的消耗。這些應(yīng)用的例子包括Merck Seron。公司,該公司的研究人員使用Biacore系統(tǒng)甄選最 優(yōu)的抗體用于磷酸激酶的檢測(cè),也用于分析抗體的生物 素化修飾可能對(duì)橋聯(lián)免疫檢測(cè)方法的潛在影響。
致謝
有關(guān)方法比較、酸解離方法和驗(yàn)證的數(shù)據(jù)由德國(guó)默克雪 蘭諾(Merck Serono)公司的Kramer博士友情提供;免 疫原性相關(guān)的篩選數(shù)據(jù)由勃林格殷格(Boehringer Ingelheim) 公司友情提供。
技術(shù)概述
利用Biacore系統(tǒng)的 結(jié)合強(qiáng)度和動(dòng)力學(xué)
Biacore系統(tǒng)使用表面等離子共振(SPR)實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)分子 相互作用。無(wú)需標(biāo)記,Biacore檢測(cè)法提供關(guān)于分子相互 作用的親和度、動(dòng)力學(xué)和特異性的信息。生物分子的活 性濃度也可以被測(cè)定。相互作用分子中的一個(gè)被固定于 傳感芯片表面上,而其他分子以液體形式流經(jīng)傳感器表 面。
兩者之間的任何相互作用通過(guò)靠近傳感器表面的質(zhì)量濃 度的變化(折光率變化)而被實(shí)時(shí)檢測(cè),結(jié)合數(shù)據(jù)顯示 在傳感圖中,并對(duì)時(shí)間作圖,響應(yīng)信號(hào)用RU表示。
復(fù)合物在相互作用過(guò)程中的形成和解離進(jìn)程可以被實(shí)時(shí) 觀測(cè),通過(guò)結(jié)合曲線的形狀可獲得的結(jié)合動(dòng)力學(xué)信息 (ka , kd )。
可以在www.gelifesciences.com/biacore上找到更多信息
A) B)
r
f寸
圖8.雙特異性ADAs在橋聯(lián)ELISA檢測(cè)法中不能被檢測(cè)到°(A)在人抗 體之間自發(fā)和隨機(jī)地發(fā)生交換,造成其中一些具有雙特異性。(B) 雙特異性IgG4在橋接ELISA中將不會(huì)被檢測(cè),因?yàn)樗鼈儽仨氂袃煞N藥物 分子與一個(gè)ADA的結(jié)合。
抗原表位特異性的測(cè)定
在研究免疫原性時(shí),ADAs的抗原表位特異性的測(cè)定十分 重要。根據(jù)FDA的建議(1),申請(qǐng)人應(yīng)該研究在抗原上 的哪些區(qū)域產(chǎn)生了免疫應(yīng)答:“FDA建議申請(qǐng)人直接針 對(duì)完整分子和內(nèi)源對(duì)應(yīng)物進(jìn)行初步篩選試驗(yàn)。然而,對(duì) 于產(chǎn)品幵發(fā),申請(qǐng)人應(yīng)該研究導(dǎo)致免疫響應(yīng)產(chǎn)生的特異 抗原區(qū)域或“抗原表位”。這種測(cè)定方法對(duì)于融合分子 可能尤為重要,因?yàn)閮蓚€(gè)蛋白是通過(guò)基因或物理手段被 “融合”在一起的??梢栽诤Y選階段就利用Biacore系統(tǒng) 進(jìn)行抗原表位特異性的測(cè)定。一個(gè)便捷的方法就是固定 全長(zhǎng)的藥物在一個(gè)流動(dòng)池(Flow cell)中,同時(shí)固定藥 物的不同結(jié)構(gòu)域在其他流動(dòng)池中(圖9)。
Stubenrauch等人幵展的工作證明,可以通過(guò)很少量的 Biacore實(shí)驗(yàn)中獲取豐富的信息(10)。通過(guò)高效地利用 這四個(gè)流動(dòng)池,可以對(duì)每個(gè)樣品進(jìn)行整合11種指標(biāo)的完 整的的免疫原性檢測(cè),包括臨床樣品中ADAs的應(yīng)答、亞 型、特異性和結(jié)合穩(wěn)定性等信息(圖9)。這種方法可將 來(lái)自藥物的特異性應(yīng)答與其他應(yīng)答區(qū)分幵來(lái),例如抗Fc 片段的IgM類(lèi)風(fēng)濕性因子應(yīng)答。研究者可以跟蹤特定的 ADA形成的時(shí)間進(jìn)程,可以實(shí)現(xiàn)針對(duì)每個(gè)病人的ADA應(yīng) 答分析,并與臨床觀察相關(guān)聯(lián)。評(píng)估ADA結(jié)合穩(wěn)定性一 般來(lái)說(shuō),在生物分子相互作用實(shí)驗(yàn)中,解離速率是一種 可以估計(jì)結(jié)合親和度的指標(biāo),抗體朝著更高親和度方向 上成熟通常會(huì)反映在更慢的解離速率上°Biacore系統(tǒng)能 夠通過(guò)對(duì)評(píng)估抗體亞型和結(jié)合穩(wěn)定性來(lái)監(jiān)控ADA的成熟 過(guò)程。陽(yáng)性臨床樣品中的ADA集群可以通過(guò)ADA與固定 于芯片的藥物之間的結(jié)合穩(wěn)定性來(lái)表征(圖10)。
時(shí)間(s)
1000-
大分子應(yīng)用專(zhuān)題
抗-IgM
第二次進(jìn)樣: 抗亞型抗體
第一次進(jìn)樣: 帶有ADA的樣品
2 全長(zhǎng)治 療藥物
抗-IgG (LC)抗-IgG (Fc) 抗-IgE
3
治療性藥物 的Fab片段
4
治療性藥物 的Fc片段
流動(dòng)池 1
(n叱)田=B1(n叱)田=
700
400
100
緩慢解離
(穩(wěn)定的相互作用)
圖9.同時(shí)進(jìn)行抗原表位作圖和亞型分析的檢測(cè)方法。
交叉反應(yīng)也可以采用相同的模式進(jìn)行測(cè)定,但是在每個(gè) 流動(dòng)池中固定不同的藥物。為了評(píng)估抗darbepoetin alfa 抗體是否存在潛在的對(duì)epoetin alfa的交叉反應(yīng),Mytych 等幵發(fā)了一種基于Biacore的雙流動(dòng)池生物傳感器免疫檢 測(cè)法,其中含有一個(gè)固定有epoetin alfa通道(3)。這 種免疫檢測(cè)法被Amgen公司作為首選方法,用于檢測(cè)和 表征人血清中的抗epoetinalfa和抗darbepoetin alfa抗體。
-200 ——
150
250
350
450
550
圖10.Biacore表征陽(yáng)性臨床樣品中ADA與到固定于芯片上的藥物的結(jié)合 穩(wěn)定性。免疫應(yīng)答成熟通常帶來(lái)更慢的解離速率(下圖)。
評(píng)估ADA的親和度或解離速率通常較難,因?yàn)?,多?shù)抗 體是二價(jià)的和異源的°Biacore T200軟件提供了專(zhuān)用工 具,可用來(lái)區(qū)分快速解離和緩慢解離的抗體組分造成的 免疫響應(yīng)。
Mytych等介紹了另外一種用于評(píng)估臨床樣品中ADA的解 離速率的方法,通過(guò)記錄ADA幵始解離前和解離40分鐘 后的響應(yīng)信號(hào)來(lái)計(jì)算信號(hào)損失百分比。6個(gè)臨床樣品的 結(jié)合信號(hào)在幵始解離40分鐘后降低大約68%和89%,而
高親和度的陽(yáng)性對(duì)照則幾乎沒(méi)有解離。
無(wú)需標(biāo)記的競(jìng)爭(zhēng)性配體結(jié)合檢測(cè)法
作為ADA表征的一部分,確認(rèn)為陽(yáng)性的樣品需要進(jìn)一步 檢測(cè)中和抗體(Nab)的存在°NAb對(duì)治療性生物藥物 有中和作用。常規(guī)的Nab檢測(cè)法是基于細(xì)胞的方法,而 這些檢測(cè)法通常很繁瑣,且重復(fù)性差。作為一種替代方 法,競(jìng)爭(zhēng)性配基結(jié)合(Competitive Ligand Binding, CLB) 檢測(cè)法會(huì)在有些時(shí)』候被研究者所使用。根據(jù)EMA指南草案, 對(duì)于單克隆抗體藥物,CLB檢測(cè)法通常作為首選方法, 而不是生物檢測(cè)法(11)。來(lái)自四個(gè)公司的案例研究已 經(jīng)證明,生物檢測(cè)法和CLB檢測(cè)法提供結(jié)果可比的NAb的 檢測(cè)(12)"LISA或ECL等需要標(biāo)記的檢測(cè)方法很可能 對(duì)NAb的檢測(cè)產(chǎn)生不利的影響。Biacore系統(tǒng)上進(jìn)行的CLB 檢測(cè)法不需要標(biāo)記,并可以實(shí)現(xiàn)完全自動(dòng)化。Biacore CLB檢測(cè)法的原理如圖11所示。
致謝
有關(guān)方法比較、酸解離方法和驗(yàn)證的數(shù)據(jù)由德國(guó)默克雪 蘭諾(Merck Serono)公司的Kramer博士友情提供;免 疫原性相關(guān)的篩選數(shù)據(jù)由勃林格殷格(Boehringer Ingelheim) 公司友情提供。
技術(shù)概述
利用Biacore系統(tǒng)的 結(jié)合強(qiáng)度和動(dòng)力學(xué)
+ 拮抗藥 物,例 I 如可溶
中和性抗 藥抗體
受體: 固定的 傳感器芯片
¥
■ 性受體
SM)國(guó)國(guó)
AM)曰國(guó)
Biacore系統(tǒng)使用表面等離子共振(SPR)實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)分子 相互作用。無(wú)需標(biāo)記,Biacore檢測(cè)法提供關(guān)于分子相互 作用的親和度、動(dòng)力學(xué)和特異性的信息。生物分子的活 性濃度也可以被測(cè)定。相互作用分子中的一個(gè)被固定于 傳感芯片表面上,而其他分子以液體形式流經(jīng)傳感器表 面。
兩者之間的任何相互作用通過(guò)靠近傳感器表面的質(zhì)量濃 度的變化(折光率變化)而被實(shí)時(shí)檢測(cè),結(jié)合數(shù)據(jù)顯示 在傳感圖中,并對(duì)時(shí)間作圖,響應(yīng)信號(hào)用RU表示。
復(fù)合物在相互作用過(guò)程中的形成和解離進(jìn)程可以被實(shí)時(shí) 觀測(cè),通過(guò)結(jié)合曲線的形狀可獲得的結(jié)合動(dòng)力學(xué)信息 (ka , kd )。
可以在www.gelifesciences.com/biacore上找到更多信息
時(shí)間(S) 時(shí)間(S) 時(shí)間(S)
圖11具有藥物中和效果的ADA在CLB檢測(cè)法中被檢測(cè)。
檢測(cè)(診斷)試劑的可靠鑒定和驗(yàn)證
經(jīng)過(guò)驗(yàn)證和全面表征的試劑是保證任何檢測(cè)方法的有效 性的先決條件-Biacore系統(tǒng)提供關(guān)于檢測(cè)/診斷試劑性 質(zhì)相關(guān)的詳細(xì)信息,例如抗體-抗原結(jié)合的特異性、動(dòng)力 學(xué)和親和度,這對(duì)于在方法幵發(fā)過(guò)程中選擇最優(yōu)的試劑 十分重要。對(duì)于某些需要二級(jí)檢測(cè)試劑的方法(如二抗 等),鑒定多種檢測(cè)試劑彼此之間同時(shí)且獨(dú)立地結(jié)合于 各自抗原至關(guān)重要。這種鑒定可以在Biacore系統(tǒng)上很容 易實(shí)現(xiàn),通過(guò)使用成對(duì)的抗原表位作圖功能自動(dòng)的完成。 除此之外,Biacore方法還能獲得的的動(dòng)力學(xué)和親和度信 息,可以幫助研究者優(yōu)化檢測(cè)方法的性能,且不會(huì)增加 對(duì)成本和其他資源的消耗。這些應(yīng)用的例子包括Merck Seron。公司,該公司的研究人員使用Biacore系統(tǒng)甄選最 優(yōu)的抗體用于磷酸激酶的檢測(cè),也用于分析抗體的生物 素化修飾可能對(duì)橋聯(lián)免疫檢測(cè)方法的潛在影響。